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生命将质膜演化为一种主动的物理化学界面,而非被动屏障;其选择性在维持内稳态的同时,也排斥了许多治疗分子。然而,大多数递送策略都试图强行使分子跨越这一边界,从而未能充分利用该界面作为组织运输的表面。受内吞过程中膜相关相分离现象的启发,我们表明,将相分离限域于质膜界面,可使细胞穿透肽(CPP)与丝素蛋白(SF)在原位发生共凝聚,从而将货物募集、膜润湿和入胞耦合为一个连续步骤。CPP 与 SF 的化学计量比可将凝聚体调控于液态样与固态样状态之间,决定其是跨越膜进入细胞,还是仅仅包覆于膜表面。冷冻透射电子显微镜(cryo-TEM)、受激发射损耗显微镜(STED)、荧光恢复后光漂白(FRAP)、活细胞追踪以及原位冷冻聚焦离子束/冷冻透射电子显微镜(in situ cryo-FIB/cryo-TEM)解析了这一过程的时序:从 30 秒内在膜表面成核,到 5 分钟内进入细胞内,其速度较以往基于相分离的递送方法快了数个数量级。该系统的递送能力由相态而非货物身份决定,以约 10 倍更低的 CPP 剂量实现了对小分子、核酸和抗体的递送。通过在进入细胞后获得胞质通路并随后重新离开细胞,同一类界面凝聚体还能够在体内跨越完整角膜实现经细胞转运,以低 4.2 倍的倍他洛尔剂量降低眼压,并将原本无法穿透的 siRNA 递送至前房。更广泛地说,这项工作确立了膜界面作为屏障通透性可编程决定因素的地位,这一概念不仅适用于该系统,也可拓展至其他能够形成凝聚体的作用伙伴和生物屏障。
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🏷️ 相分离 界面凝聚体 跨膜递送 细胞穿透肽 经细胞转运 药物递送
来源出处
相位调谐的界面凝聚体驱动跨细胞通达性
https://www.biorxiv.org/content/10.64898/2026.06.22.731667v1?rss=1